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本试剂盒适用于从哺乳动物组织和培养细胞等样品中提取细胞核蛋白，提取步骤温和，制备的核蛋白能保持天然活性，可以直接用于转录因子活性分析、凝胶阻滞实验(gel shift assay)、免疫共沉淀、Western Blotting、DNA足迹图实验、甲基化干扰实验和酶活性测定等研究。

DNA只存在于细胞核内，因此参与转录调节和DNA复制的蛋白质主要存在于细胞核中。要研究蛋白质与DNA的相互作用，首先需要制备能够与DNA作用的天然细胞核蛋白质。目前、细胞核蛋白质制备方法一般都比较繁琐，一次处理大量样品时尤其不便，为此本公司基于溶胀法原理开发了本试剂盒。

• 提取制备过程简便，只需要一小时。
  
• 实验重复性好，尤其适合同时处理多个样品。
  
• 可用于培养的动物细胞，也可以用于新鲜组织细胞。
  
• 1×10⁶个细胞中可以得到50～70μg的核蛋白。

• 本试剂盒只适用于哺乳动物组织和培养细胞，不适用于植物和真菌等生物。
  
• 本试剂盒只适用于新鲜的组织样品，对冻存过的组织抽提效果不是很理想。
  
• 所有接触样品的用具和试剂均需预冷，以免蛋白质的降解及失活。
  
• PMSF一定要在抽提试剂加入到样品中前2～3分钟内加入，以免PMSF在水溶液中很快失效。

取适当量（根据样品数量确定）的动物细胞溶胀液和动物细胞核溶胀液到新的塑料瓶中，置于冰上预冷，并在使用前数分钟内同时向动物细胞溶胀液和动物细胞核溶胀液中加入自备的PMSF和DTT，使PMSF的最终浓度为0.2mM，DTT的最终浓度为1mM。实验中所用试剂均需先预冷。

1. 培养细胞：将覆盖率为55～65%的培养细胞用自备的胰酶溶液按标准的胰酶法处理，然后刮到1.5mL塑料离心管中，4℃ 600g离心3分钟，小心弃上清。细胞数量最好在5×10^5-7个。细胞沉淀体积约0.1mL。
   
2. 悬浮细胞：直接将5×10^5-7个悬浮细胞转移到1.5mL塑料离心管中，4℃ 600g离心3分钟，小心弃上清。细胞沉淀体积约0.1mL。
   
3. 用1mL自备的预冷的PBS缓冲液重悬细胞沉淀，然后4℃ 600g离心3分钟，小心弃上清。
   
   • 必须尽快用PBS缓冲液洗涤细胞沉淀，否则沉淀细胞产生的CO₂将使局部pH减低产生毒性。
4. 在细胞沉淀中加入1mL预加了PMSF和DTT的动物细胞溶胀液，用手指轻柔弹管壁使细胞沉淀悬浮起来。最好不要用枪头。
   
5. 冰浴10分钟。如果有条件可以取少量样品涂片，在显微镜下观察，90%的细胞将呈现气球状。如果没有则继续冰浴直到90%的细胞呈现气球状。
   
6. 涡旋激烈震荡10～30秒混匀。如果有Dounce玻璃匀浆器，也可以用预冷的匀浆器匀浆10～12次。如果有条件可以取少量样品涂片，在显微镜下观察，90%的细胞将破裂。如果未破裂细胞折光度高，并且没有膨胀，则表示这些细胞已经死亡。如果这样的细胞太多，则需要重新取样。
   
7. 4℃ 1000g离心3分钟，小心弃上清。沉淀为细胞核，上清为胞浆成分，如果需要可以留存上清。
   
8. 在细胞核沉淀中加入100μL预加了PMSF和DTT的、预冷的动物细胞核溶胀液，轻弹离心管混匀，使沉淀悬浮起来。
   
9. 冰浴20分钟。
   
10. 4℃ 1000g离心2分钟，小心收集上清液（细胞核提取物），可立即用于后续实验，也可以分装后放-70℃长期保存。

11. 将100～150mg新鲜组织置于培养皿中，用手术剪将组织尽可能切成非常细小的碎片，尽量去除脂肪组织和结缔组织等非目的组织，用自备的PBS缓冲液洗涤2次，离心后去上清。在组织沉淀中加入400μL预加了PMSF和DTT的动物细胞溶胀液，在预冷的玻璃匀浆器内充分匀浆。匀浆需在冰浴或4℃进行。
    
12. 匀浆后把匀浆液转移到塑料离心管内，用手指弹管壁使沉淀悬浮起来，冰浴放置10～20分钟，涡旋激烈震荡10秒混匀。
    
13. 接下来按照步骤7-10操作，即得到新鲜组织细胞核蛋白提取物。